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【摘要】狹霉素(angustmycin)有A、B和C三個組分，其中A和C為核苷類化合物，B組分為腺嘌呤。狹霉素A是一種特異的鳥嘌呤核苷酸(GMP)合成酶抑制劑，在實驗室中廣泛應(yīng)用。近十年來，我國科學(xué)工作者發(fā)現(xiàn)它具有植物細(xì)胞分裂素的生物活性，在植物學(xué)研究及農(nóng)業(yè)生產(chǎn)上也有良好的應(yīng)用前景。

【關(guān)鍵詞】狹霉素A作用機制應(yīng)用研究

Advancesinangustmycinsandtheirapplications

ABSTRACTAngustmycinshavethreeconstituents:angustmycinA,BandC.AngustmycinAandCarenucleosideantibiotics,andangustmycinBisidenticalwithadenine.AngustmycinA(alsocalledlingfasu)hasbeenappliedinthelaboratoryasaspecificinhibitorofGMPsynthase.Inthelasttenyears,ChinesescientistshavefoundthatangustmycinAhadbiologicalactivitiesofcytokinin.Ithasapromisingapplicationsinthebotanicalresearchandtheagriculturalproduction.

KEYWORDSAngustmycinA;Mechanismofaction;Applicationresearch

狹霉素(angustmycins)是由吸水鏈霉菌(Streptomyceshygroscopicsvar.angustmyceticus)產(chǎn)生的抗生素。已知它包括狹霉素A(angustmycinA)、狹霉素B(angustmycinB)和狹霉素C(angustmycinC)三種組分，其中組分B是腺嘌呤(adenine)，A和C是腺嘌呤的核苷類衍生物(Fig.1)。自20世紀(jì)50年代狹霉素被發(fā)現(xiàn)以來，由于其抗菌譜極窄且抗菌活性較弱，并不為人們所矚目。然而近十多年來的研究進(jìn)展重新喚起了

Fig.1ThestructuresofangustmycinAandC人們對狹霉素的興趣，特別是我國農(nóng)業(yè)科學(xué)工作者發(fā)現(xiàn)狹霉素A對植物有明顯的生物活性，被視為一種新的植物生長調(diào)節(jié)劑。研究者將其重新命名為“PGR08”(plantgrowthregulator08，植物生長調(diào)節(jié)劑08)和“靈發(fā)素”(lingfasu，LFS)，為狹霉素A的深入研究與應(yīng)用開辟了新的領(lǐng)域。下面就狹霉素的發(fā)現(xiàn)、研究進(jìn)展及其新用途作一概述。

1狹霉素的發(fā)現(xiàn)

1954年東京大學(xué)農(nóng)業(yè)化學(xué)系Yuntsen等在尋找抗結(jié)核菌株的過程中從東京附近的土壤中分離到一個新菌株6A704［1］。該菌株能產(chǎn)生一種特異性抑制分枝桿菌的物質(zhì)，對其它的革蘭陰性、陽性細(xì)菌、真菌和酵母無效。通過分離純化，得到了粗結(jié)晶，并且初步對其理化性質(zhì)、生物活性和穩(wěn)定性進(jìn)行了測定。

1956年Yuntsen等又發(fā)現(xiàn)他們以前獲得的狹霉素是由三個組分組成，即狹霉素A、B和C，并對它們的分離技術(shù)、理化性質(zhì)等方面做了進(jìn)一步研究［2］。

狹霉素A含水結(jié)晶的熔點128～130℃，163～164.5℃降解；甲醇中的結(jié)晶不含水，172～174℃降解。在260nm處有最大紫外吸收峰(甲醇溶液中)。狹霉素A溶于水、甲醇、乙醇、吡啶、乙酸、二甲基甲酰胺、苯酚，難溶于丁醇、二氧六環(huán)，不溶于乙醚、丙酮、氯仿、二硫化碳、乙酸乙酯和其它有機化合物。對Schiff、ninhydrin、FeCl3、Sakaguchi、Molisch、Indole、ammoniacalAgNO3、Kossel和Fearonmitchel試劑呈陽性反應(yīng)，對Fehling試劑呈陰性反應(yīng)。

狹霉素B在350～355℃降解，220℃左右升華，分子式C5H5N5，260nm的紫外最大吸收、紅外光譜均與腺嘌呤相同。因此，狹霉素B即為腺嘌呤。

狹霉素?zé)岱€(wěn)定性較好，在pH5～9的條件下能保持穩(wěn)定。但在100℃，pH2的條件下，5min失活。

通過連續(xù)稀釋實驗，確定狹霉素抑制Mycobacterium607和Mycobacteriumphlei生長的最低抑菌濃度為25μg/ml。對于惡性MycobacteriaH37Rv在濃度100μg/ml時也沒有活性。狹霉素是幾乎沒有毒性的物質(zhì)。小鼠腹腔內(nèi)注射2.5g/kg，沒有任何毒副反應(yīng)。

2研究進(jìn)展

1959年Eble等［3～6］對狹霉素C的研究結(jié)果顯示，狹霉素C極易溶于二甲基甲酰胺、二甲基亞砜和熱水中，室溫下的溶解度為：水8mg/ml，甲醇8mg/ml，乙醇6mg/ml，1丁醇2mg/ml，乙酸乙酯0.23mg/ml。25℃的比旋度為-53.7°(c，1%的二甲基亞砜溶液)、-68°(c，1%的二甲基甲酰胺溶液)。在酸性條件下不是很穩(wěn)定，pH2.0，30℃的半衰期是18h；中性條件下0到25℃很穩(wěn)定。在0.01mol/L酸溶液中259nm時紫外光譜的吸收系數(shù)是508；同時證實了狹霉素C就是阿洛酮糖腺苷(psicofuranine)，結(jié)構(gòu)為6amino9(βDpsicofuranosyl)purine。狹霉素C在體內(nèi)有抗微生物和抗腫瘤活性，小鼠防護(hù)實驗中無論口服還是皮下給藥都能有效的抑制Streptococcushemolyticus和Escherichiacoli。對Diplococcuspneumoniae、Proteusvulgaris、Pseudomonasaeruginosa和Salmonella的感染沒有活性，對病毒和線蟲感染也不起作用。該抗生素還能降低小鼠腎細(xì)胞Micrococcusaureus慢性感染的數(shù)目。在普通的肉湯和瓊脂培養(yǎng)基中，狹霉素C在體外沒有活性，但在含有肝臟提取液的半合成培養(yǎng)基中，檢定板在檢測前冷藏4h的情況下，狹霉素C在體外對Salmonellapullorum、Staphylococcusaureus、Staphylococcusalbus、Streptococcushemolyticus和Escherichiacoli有活性。狹霉素C在體外用平板擴散法檢測的限度：水中10mg/ml，血液中3mg/ml；濁度評價的檢測限度0.5mg/ml。檢定菌均為StaphylococcusaureusFDA209P。

Yuntsen等在1958年報道了狹霉素A的結(jié)構(gòu)［7］。隨著研究的深入，1964年Hocksema通過核磁共振光譜認(rèn)為以前提出的結(jié)構(gòu)有誤，指出在糖基中不存在C甲基基團［8］，對1958年報道的結(jié)構(gòu)進(jìn)行了修正，同時證明了狹霉素A就是德夸霉素(decoyinine)［8］。德夸霉素原為阿洛酮糖腺苷發(fā)酵過程的副產(chǎn)物，與狹霉素A具有相同的分子式，水合產(chǎn)物、甲醇和乙醇的溶劑化物有相同的熔點，相同的紅外光譜。通過兩者的核磁共振光譜及其相關(guān)降解產(chǎn)物的比較，顯示兩者同質(zhì)。

1966年Chassy等推斷出德夸霉素中糖的結(jié)構(gòu)為6DeoxyDerythro2，5hexodiulose，完成了糖的生物合成過程的研究，指出糖的合成直接來源于D［114C］葡萄糖或14C標(biāo)記的D果糖。同時通過14C標(biāo)記狹霉素C中的腺嘌呤，證實了在Streptomyceshygroscopicus發(fā)酵過程中狹霉素A、C可以相互轉(zhuǎn)化［9］。

1968年McCarthy等完成了狹霉素C到狹霉素A的化學(xué)轉(zhuǎn)化過程［10］。狹霉素C經(jīng)過下面5個步驟，轉(zhuǎn)換為狹霉素A。

*與原甲酸乙酯(三乙氧基甲烷)在15℃反應(yīng)48～96h；

*在純二氧雜環(huán)乙烷中與三氟化硼乙醚反應(yīng)；

*在吡啶中與對甲苯磺酰氯反應(yīng)；

*在叔丁醇吡啶溶液中與叔丁醇鉀反應(yīng)；

*在冰乙酸中與二氧雜環(huán)乙烷在50℃反應(yīng)30h

20世紀(jì)60年代末，我國抗生素工作者從我國的土壤中也篩選到了狹霉素的產(chǎn)生菌，獲得了狹霉素的A、B和C結(jié)晶。A組分命名為“Antibiotic8”(抗菌素8號)，被證實對黏膜炎布拉漢菌(Branhamellacatarrhalis)有很強的活性。該結(jié)果被收錄于1977年版的《抗菌素生物理化特性第1分冊》［11］。

近年來我國抗生素工作者又對狹霉素進(jìn)行了現(xiàn)代光譜學(xué)研究，特別是通過X射線單晶衍射的測定，進(jìn)一步明確了狹霉素A晶體的立體結(jié)構(gòu)［12］(Fig.2)。狹霉素A晶體結(jié)構(gòu)屬三方晶系，空間群為P3或P3z；晶胞參數(shù)：a=b=10.736(1)，c=10.030(1)，γ=120.000，V=1001.19(1)3，Z=3；分子式為C11H13O4N5·H2O，含一分子結(jié)晶水，不含結(jié)晶水的相對分子質(zhì)量為279.26。分子的骨架有三個環(huán)，A環(huán)和B環(huán)共平面，C環(huán)呈信封式構(gòu)象，A、B環(huán)與C環(huán)的二面角值為72.9(4)0。

3狹霉素的抗菌活性與作用機制Fig.2ThespatialstructureofangustmycinA

1961年Miyairi等［13］報道，狹霉素A、C在合成培養(yǎng)基中均有抗微生物的活性，在天然培養(yǎng)基中無活性，其活性能被鳥嘌呤、鳥嘌呤核苷、腺嘌呤核苷、次黃嘌呤核苷、黃嘌呤核苷及相關(guān)物質(zhì)抑制。狹霉素A能抑制枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis)核酸片段合成過程中32P的進(jìn)入，通過紫外吸收法可以看到核酸數(shù)量的減少；在狹霉素A作用于枯草芽孢桿菌PCI2191h后再加入14C標(biāo)記的氨基酸，可以看到狹霉素A能減弱14C標(biāo)記的氨基酸進(jìn)入枯草芽孢桿菌PCI219機體的蛋白質(zhì)片段。根據(jù)這些生化現(xiàn)象與專性抑制劑化合物的結(jié)構(gòu)推斷，狹霉素A在微生物的核酸及蛋白質(zhì)的生物合成代謝中具有抑制劑作用，所以表現(xiàn)出抗微生物的活性。狹霉素C抗腫瘤轉(zhuǎn)移的作用機制也是類似情況。

1964年Bloch［14］進(jìn)一步明確了狹霉素A的作用機制，指出它對磷酸核糖焦磷酸化激酶有抑制作用，從而抑制XMP(黃嘌呤核苷酸)轉(zhuǎn)化為GMP(鳥嘌呤核苷酸)。

4狹霉素A的應(yīng)用

4.1在實驗室研究工作中的應(yīng)用

狹霉素A在國外目前最主要的是把它作為一種特異性的GMP合成酶抑制劑，比較廣泛地用于實驗室研究工作。

(1)加入狹霉素A，枯草芽孢桿菌在營養(yǎng)豐富的條件下孢子的形成為指數(shù)性增長［15］。

(2)狹霉素A可以影響枯草芽孢桿菌細(xì)胞壁的必要組成成分肽聚糖(peptidoglycan)的合成和翻轉(zhuǎn)。加入狹霉素A5min后，細(xì)胞壁合成速率下降了50%。它除了可以抑制細(xì)胞壁生物合成途徑的最后一部分，還可以防止細(xì)胞的自溶和細(xì)胞壁翻轉(zhuǎn)。在氨基酸和葡萄糖存在的條件下，加入狹霉素A可以除去細(xì)胞中的鳥嘌呤核苷，從而誘導(dǎo)枯草芽孢桿菌孢子的形成［16］。

(3)在特定的培養(yǎng)基中，狹霉素A可以引起枯草芽孢桿菌中順烏頭酸激酶活性和citB基因復(fù)制的同步增長［17］。

(4)狹霉素A可以使細(xì)胞在限制性培養(yǎng)基中生成氣生菌絲；它還能有效地抑制液體培養(yǎng)基中水生孢子的形成［18］。

(5)狹霉素在其它新陳代謝副產(chǎn)物反饋抑制的條件下，控制枯草芽孢桿菌孢子形成的開始和進(jìn)展。它不能逆轉(zhuǎn)枯草芽孢桿菌野生菌株中代謝副產(chǎn)物對α淀粉合成酶的抑制作用，但是可以促進(jìn)突變株中合成的能力。它不影響α淀粉合成酶的活性［19］。

(6)狹霉素A誘導(dǎo)松弛型枯草芽孢桿菌菌株中基因comG的表達(dá)能力，同時使細(xì)胞內(nèi)GTP(鳥苷三磷酸)水平的急劇降低。在指數(shù)期到穩(wěn)定期之間加入狹霉素A，松弛型菌株中的轉(zhuǎn)換數(shù)提高了100倍［20］。

4.2在植物和農(nóng)業(yè)上的應(yīng)用

植物細(xì)胞分裂素(cytokinin，CTK)是一類普遍存在于植物界且非常重要的植物激素，直接影響植物的細(xì)胞分裂、器官建成、葉片衰老和其它一些重要的生理過程。我國科技工作者在20世紀(jì)80年代末首先證明了狹霉素A具有植物細(xì)胞分裂素的生物活性，并用研究代號PGR08發(fā)表了最初的部分研究結(jié)果［21，22］。用高壓液相層析(HPLC)技術(shù)證明，PGR08在植物組織培養(yǎng)基滅菌時所需要的pH及高溫高壓條件下不被破壞分解，這種穩(wěn)定性為其在植物組織培養(yǎng)中的推廣應(yīng)用提供了基本保證。為便于在農(nóng)業(yè)領(lǐng)域推廣應(yīng)用，隨后又以“08”的諧音取名為“靈發(fā)素”(lingfasu，LFS)，并在促進(jìn)種子萌發(fā)、植物組織培養(yǎng)和蔬菜保鮮等方面成功地加以應(yīng)用，取得了良好的效果。將狹霉素A的研究從醫(yī)藥學(xué)引入植物學(xué)和農(nóng)學(xué)，開創(chuàng)了新的研究領(lǐng)域，并在國內(nèi)獲得了發(fā)明專利［23］(專利號：ZL02154161.2)。

(1)“靈發(fā)素”對小麥種子萌發(fā)與幼苗生長的影響［24］通過PGR08浸種處理，在(25±1)℃條件下，小麥種子發(fā)芽率48h內(nèi)比對照增加9.3%～19.3%，同時種子中淀粉酶的活性比對照增加106.3%～162.5%。育苗6d后，苗高與根長都相當(dāng)于對照的2～4倍。25d后，麥苗的一級分蘗相當(dāng)于對照的1.6～2.3倍，并有1/4～1/2的植株出現(xiàn)二級分蘗。同樣條件下，對照組卻無二級分蘗。上述結(jié)果證明PGR08有促進(jìn)植物生長的生物活性。

(2)PGR08對小麥幼苗抗旱性的影響［25］PGR08浸種，可使4葉期的小麥幼苗在干旱脅迫下，葉片氣孔阻力增大，蒸騰強度下降，保水力提高，束縛水/自由水比值上升，而總含水量無明顯變化。同時，葉片中葉綠素、可溶性蛋白質(zhì)的含量亦維持在較高水平，萎蔫系數(shù)略有下降。從而證明PGR08對植物有一定的抗逆和抗衰老作用。

(3)“靈發(fā)素”直接誘導(dǎo)馬鈴薯愈傷組織分化試管薯［26］目前國內(nèi)、外都是通過誘導(dǎo)馬鈴薯試管苗匍匐莖或者莖段腋芽的膨大來生產(chǎn)試管薯。用LFS直接誘導(dǎo)馬鈴薯愈傷組織分化試管薯，不僅直接證明LFS具有促進(jìn)植物細(xì)胞分裂和誘導(dǎo)植物器官分化的生物活性，而且可能為馬鈴薯試管薯的獲得提供一條更簡便的途徑。

(4)“靈發(fā)素”對三七愈傷組織發(fā)生和增殖的影響［27］以三七莖段為外植體，用以下5組MS改良培養(yǎng)基進(jìn)行對比研究：①MS(MurashigeSkoog)+2，4D2.0(mg/L，下同)(CK)；②MS+2，4D2.0+N6BA(N6芐基腺嘌呤)2.0；③MS+2，4D2.0+KT(激動素)2.0；④MS+2，4D2.0+ZT(玉米素)2.0；⑤MS+2，4D2.0+LFS2.0。結(jié)果表明，在CK的基礎(chǔ)上添加LFS可以促進(jìn)莖段愈傷組織早發(fā)生1～2周，誘導(dǎo)率達(dá)81%，比CK高出30%以上。LFS能使愈傷組織的鮮重在40d內(nèi)增加360.2%，而KT、ZT和N6BA僅增加13.4%～21.8%。以平均接種1g愈傷組織計，40d內(nèi)含LFS的第⑤組收獲干物質(zhì)81.5mg，另外4組只能收21.6～25.9mg。特別是LFS可以使愈傷組織繼代保存3年以上未表現(xiàn)老化跡象，一直保持增殖能力，提示LFS有顯著促進(jìn)植物細(xì)胞分裂的能力，這正是一般植物細(xì)胞分裂素典型的生物活性。

(5)“靈發(fā)素”對三七胚狀體發(fā)生及其成苗的影響［28］以MS為基本培養(yǎng)基，加入適量的2，4D和LFS，暗處培養(yǎng)，三七莖段愈傷組織可被誘導(dǎo)出胚狀體，2～3個月內(nèi)發(fā)生機率可達(dá)90%左右。MS+2，4D1.5+LFS2.0于光下培養(yǎng)，約有30%以上的胚狀體能發(fā)育成健壯的全苗，說明LFS有促進(jìn)植物分生組織進(jìn)行器官分化的活性。

(6)在羅漢果組織培養(yǎng)中的生物效應(yīng)［29］在羅漢果組織培養(yǎng)中，LFS可誘導(dǎo)外植體腋芽優(yōu)先萌發(fā)，并迅速生長。由于營養(yǎng)分配利用的原因，同時抑制了愈傷組織的發(fā)生和生長，在繼代苗的增殖中也有同樣表現(xiàn)。愈傷組織的顯著減少對保持組織培養(yǎng)苗的遺傳穩(wěn)定性，減少不良變異，具有積極意義。以MS為基本培養(yǎng)基，添加LFS0.2mg/L，可使羅漢果單節(jié)莖段外植體成苗率達(dá)90%以上；添加等量的N6BA或KT時，成苗率不足30%，且生成大量愈傷組織。

LFS還可以顯著促進(jìn)不定根的發(fā)生與生長，無須添加任何生長素，即可使羅漢果組織培養(yǎng)繼代苗發(fā)育成根苗齊全的再生植株。這有利縮短生產(chǎn)周期，提高羅漢果組織培養(yǎng)苗的質(zhì)量。目前學(xué)術(shù)界普遍認(rèn)為N6BA和KT都是抑制植物不定根的發(fā)生。LFS與N6BA及KT同屬腺嘌呤類細(xì)胞分裂素，但對植物不定根的發(fā)生，卻有截然相反的作用。對此許鴻源認(rèn)為，如能深究這一現(xiàn)象的內(nèi)在原因，將有利于揭示植物不定根發(fā)生的生理機制。

(7)對蔬菜菊花腦的保鮮作用［30］菊花腦具有清熱解毒、平肝明目的功效，是一種保健型蔬菜。LFS能顯著抑制其呼吸強度，減緩葉綠素和維生素C的降解速度。在(8±2)℃時，10mg/L的LFS比同濃度的N6BA、KT和3mg/L的CPPU(N2氯4吡啶基，N苯基脲)有更好的保鮮效果，儲存10d外觀仍青綠鮮活，無任何異味。

5結(jié)束語

狹霉素A作為一種原來不太被人們重視的抗生素品種，隨著應(yīng)用研究的不斷深入，逐漸擴大了它的使用范圍，特別是我國學(xué)者在農(nóng)業(yè)方面的研究，使這個在醫(yī)藥界尚無大作為的抗生素?fù)u身變成了一種新的植物生長調(diào)節(jié)劑，在植物學(xué)和農(nóng)學(xué)方面展現(xiàn)了良好的應(yīng)用前景和社會價值。但是，在國內(nèi)狹霉素A(靈發(fā)素，PGR08)至今沒有工業(yè)化生產(chǎn)，國外的價格又十分昂貴(Alexis生產(chǎn)，280元/mg)。所以筆者認(rèn)為，若能夠?qū)ΚM霉素A進(jìn)行深入的研究開發(fā)，并實現(xiàn)其產(chǎn)業(yè)化批量生產(chǎn)，滿足科學(xué)研究和農(nóng)業(yè)上生產(chǎn)的需要，將會有光明前景。

【參考文獻(xiàn)】

［1］YuntsenH,YoneharaH,UiH.StudiesonanewantibioticangustmycinI［J］.JAntibiot,1954,7(4):113

［2］YuntsenH,OhkumaK,IshiiY,etal.StudiesonangustmycinⅢ［J］.JAntibiot,1956,9(6):195

［3］EbleTE,HoeksemaH,BoyackGA.PsicofuranineⅠ.Discpvery,isolation,andproperties［J］.AntibiotChemother,1959,Ⅸ(7):419

［4］LewisC,ReamesHR,RhulandLE.PsicofuranineⅡ.Studiesinexperimentalanimalinfections［J］.AntibiotChemother,1959,Ⅸ(7):421

［5］VavraJJ,DietzA,ChurchillBW,etal.PsicofuranineⅢ.Productionandbiologicalstudies［J］.AntibiotChemother,1959,Ⅸ(7):427

［6］HankaLJ,BurchMR,SokolskiWT.PsicofuranineⅣ.Microbiologicalassay［J］.AntibiotChemother,1959,Ⅸ(7):432

［7］YuntsenH.OnthestudiesofangustmycinsVI.ChemicalstructureofangustmycinA［J］.JAntibiot,1958,11(2):79

［8］HoeksemaH,SlompG.AngustmycinAanddecoyinine［J］.TetrahedronLett,1964,5(27):1787

［9］ChassyBM,SugimoriT,SuhadolnikRJ.Thebiosynthesisofthe6deoxyDerythro2,5hexodiulosesugarofdecoyinine［J］.BiochimBiophysActa,1966,130:12

［10］McCarthyJR,RobinsRK,RobinsMJ.PurinenucleosidesXXII.ThesynthesisofangustmycinA(decoyinine)andrelatedunsaturatednucleosides［J］.JAmChemSoc,1968,28(8):4993

［11］抗菌素生物理化特性第1分冊［M］.北京：人民衛(wèi)生出版社，1977：102

［12］解云英，姜蓉，許鴻章.兩株吸水鏈霉菌所產(chǎn)Angustmycins的現(xiàn)代光譜學(xué)研究［J］.中國抗生素雜志，2004，29(11)：11

［13］MiyairiN,TanakaN,UmezawaH.EffectofangustmycinAonincorporationof32Pand14Caminoacids［J］.JAntibiot,1961,XIV(3):119

［14］BlochA,NicholCA.Inhibitionofribosephosphatepyrophosphokinaseactivitybydecoyinine,anadeninenucleoside［J］.BiochemBiophysResCommunications,1964,16(5):400

［15］IkeharaK,OkamotoM,SugaeK.InductionofBacillussubtilissporulationbydecoyinineandtheconcomitantdisappearanceofppGppinvegetativecells［J］.JBiochem,1982,91(3):1089

［16］UrataniB,LopezJM,FreeseE.EffectofdecoyinineonpeptidoglycansynthesisandturnoverinBacillussubtilis［J］.JBacteriol,1983,154(1):261

［17］DingmanDW,RosenkrantzMS,SonensheinAL.RelationshipbetweenaconitasegeneexpressionandsporulationinBacillussubtilis［J］.JBacteriol,1987,169(1):3068

［18］OchiK.MetabolicinitiationofdifferentiationandsecondarymetabolismbyStreptomycesgriseus:significanceofthestringentresponse(ppGpp)andGTPcontentinrelationtoafactor［J］.JBacteriol,1987,169(8):3608

［19］NicholsonWL,ChamblissGH.EffectofdecoyinineontheregulationofαamylasesynthesisinBacillussubtilis［J］.JBacteriol,1987,169(12):5867

［20］InaokaT,OchiK.RelAproteinisinvolvedininductionofgeneticcompetenceincertainBacillussubtilisstrainsbymoderatingthelevelofintracellularGTP［J］.JBacteriol,2002,184(14):3923

［21］許鴻源.PGR08生物活性及其應(yīng)用研究(簡報)［J］.廣西農(nóng)學(xué)院學(xué)報，1989，8(1)：4

［22］許鴻源，許鴻章，楊美純，等.PGR08理化性質(zhì)及生物活性的研究［J］.廣西植物，2003，23(4)：461

［23］許鴻源.狹霉素在植物學(xué)和農(nóng)學(xué)上的應(yīng)用［J］.發(fā)明專利公報，2003，19(34)：6

［24］許鴻源，許鴻章.PGR08對小麥種子萌發(fā)與幼苗生長的影響［J］.廣西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報，1995，14(3)：213

［25］周岐偉，許鴻源，楊美純.PGR08對小麥幼苗抗旱性的影響［J］.廣西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報，1996，15(4)：1005

［26］許鴻源，吳丹紅，許鴻章，等.“靈發(fā)素”直接誘導(dǎo)馬鈴薯愈傷組織分化試管薯［J］.植物生理學(xué)通訊，2003，39(5)：465

［27］許鴻源，蒙愛東，李春霞，等.靈發(fā)素對三七愈傷組織發(fā)生和增殖的影響［J］.中藥材，2004，27(1)：711

［28］許鴻源，蒙愛東，李春霞，等.靈發(fā)素對三七胚狀體發(fā)生及其成苗的影響［J］.中藥材，2004，27(10)：1001

［29］鄧惠文，許鴻源，江文，等.藥品與食品兼用蔬菜菊花腦的保鮮試驗［J］.蔬菜產(chǎn)業(yè)，2005，1：13

［30］許鴻源，周鳳鈺，何冰，等.LFS、N6BA和KT在羅漢果組織培養(yǎng)中不同的生物效應(yīng)［J］.種子，2006，25(8)：4